无菌制剂灌装一分钟掌握动物活体成像实验全流程

　　无菌制剂灌装动物活体成像技术主要包括生物发光与荧光发光两种技术。生物发光是利用荧光素酶基因标记DNA，通过基因表达产生的蛋白酶与相应底物发生化学反应产生光信号（图1）。荧光发光采用荧光物质或荧光物质标记的抗体、纳米材料、药物等导入到活体体内，通过外界激发光源激发获取成像。
　　图1 生物发光活体成像检测原理
　　通过活体成像技术可以观测活体动物体内肿瘤的生长和转移、炎症的发生、特定基因的表达和药物作用效果等生物学过程。前期小爱介绍了两种活体发光成像技术在科学研究中的应用案例，我们可以根据自己的实验需求结合技术的优缺点（表1）选择合适的体内发光技术。
　　表1 生物发光与荧光发光成像技术优缺点
　　成像设备
　　优点
　　缺点
　　应用领域
　　生物发光成像
　　实时长期监测体内的各种生物学过程；
　　背景噪声低，灵敏度高；
　　无放射性，不损伤体内正常细胞。
　　成本较高；
　　波长短穿透力差；
　　细胞构建耗时费力。
　　基因表达，细胞、病毒和细菌示踪等。
　　荧光成像
　　简单、方便、价廉；
　　标记靶点多样；
　　易于被大多数研究人员接受。
　　背景噪音强，灵敏度低；
　　染料可能有毒性。
　　基因表达，蛋白和小分子、细胞、病毒和细菌示踪等。
　　本期小爱以生物发光成像实验为例带大家一起学习动物活体成像实验具体操作流程。
　　一个完整的生物发光活体成像过程包括构建荧光素酶重组质粒、细胞转染和筛选、荧光素酶活性鉴定阳性克隆，再将阳性克隆细胞移植到体内建立动物模型，进而通过小动物活体成像系统检测动物体内特定部位发出的荧光信号。最后取出肿瘤组织，通过染色进行病理形态学分析。
　　1、构建荧光素酶重组质粒
　　含荧光素酶的重组质粒根据实验需求可以自己实验室构建，也可以来源于其它实验室惠赠或市售。
　　2、细胞转染和筛选
　　常用的细胞转染方法是化学转染法，对于一些较难转染的细胞（如原代细胞、干细胞、不分化的细胞等），可以使用转染增强剂聚凝胺(abs42025397)来提高转染效率。按照转染试剂盒说明书的操作步骤进行转染即可。
　　为筛选稳定表达目的蛋白的细胞株，需要确定能够杀死未转染宿主细胞的抗生素最低浓度，可以通过建立杀灭曲线来实现，我们以G-418(abs44062790)最佳筛选浓度的确定为例。
　　1）第一天：处于对数生长期的未转染的细胞按照20-25%的细胞密度（对于需要更高密度来检测活力的细胞，可增加接种量）。铺在合适的培养板上，37℃，CO2培养过夜；
　　2）根据细胞类型，设定合适范围内的浓度梯度。以哺乳动物细胞为例，可设定0，50，100，200，400，800，1000μg/mL；
　　3）第二天：去除旧的培养基，换用新鲜配制的含有相应浓度G-418的培养基。每个浓度做三个平行孔；
　　4） 接下来每3-4天更换新的含G-418的培养基；
　　5）按照固定的周期（如每2天）进行活细胞计数来确定阻止未转染细胞生长的恰当浓度。选择在理想的天数（通常是7-10天）内能够杀死绝大多数细胞的最低浓度为稳定转染细胞筛选用的工作浓度。
　　3、荧光素酶活性鉴定阳性克隆
　　筛选的单一抗性克隆传代至第五代时用多功能酶标仪检测荧光素酶活性。
　　1）按1×105个/孔接种到24孔板，24h后裂解细胞，12000rpm，4℃离心10min，收集裂解物；
　　2）取上清10μL加入96孔白板中，向每孔加入50μL荧光素酶底物，反应片刻读取荧光值，每个克隆设3个复孔；
　　3）保留荧光值高的细胞克隆继续传代培养，再过5代后进行荧光素酶活性检测。保留荧光值维持较高的克隆直至第30代，荧光素酶活性最高的几个克隆即为阳性克隆。
　　需要注意的是，筛选的阳性克隆细胞数理论上应与发光强度具有线性相关性，并且阳性克隆细胞应和未转染的细胞具有相似的生长趋势。因此，我们在确定阳性克隆细胞系后可以增加这两个验证实验以确保整个实验的完整性和可靠性。